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Bedienungsanleitung für GoTaq® Probe 1-Step RT-qPCR System

Schnellstartanleitung und technisches Handbuch für das GoTaq® Probe 1-Step RT-qPCR System. Erfahren Sie mehr über die Vorbereitung der Reaktionsmischung, Lagerbedingungen, Thermocycler-Protokolle und Kontaminationsvermeidung.

Schnelle Antworten aus der Anleitung

Kurze Antwort

  • Dieses Handbuch beschreibt die Verwendung des GoTaq® Probe 1-Step RT-qPCR-Systems, einschließlich der Vorbereitung der Reaktionsmischung, der Zugabe von Referenzfarbstoff und der Thermocycling-Parameter. S. 1, 7, 8

Wichtigste Schritte

  • Zugabe von CXR-Referenzfarbstoff S. 7
  • Zusammenbau der RT-qPCR-Reaktionsmischung S. 7, 8
  • Durchführung des Thermocycling S. 8, 9

Erste Inbetriebnahme

  • Reagenzien auftauen S. 7
  • Reaktionsmischung vorbereiten S. 7, 8
  • RNA-Template hinzufügen S. 8
  • Versiegeln und zentrifugieren S. 8

Technische Daten

Parameter Wert Hinweis Seiten
Reaktionsvolumen 20µl Endvolumen der Reaktion S. 7
Lagertemperatur -30°C bis -10°C Empfohlene Lagertemperatur für alle Komponenten S. 4
Primer-Konzentration 200nM–1µM Empfohlener Konzentrationsbereich S. 5, 8
Sonden-Konzentration 100–300nM Empfohlener Konzentrationsbereich S. 5, 8

Wo es im PDF steht

  • Produktbeschreibung S. 1, 2, 3
  • Komponenten und Lagerung S. 4
  • Protokoll S. 6, 7, 8
  • Thermocycling S. 8, 9
Inhaltsverzeichnis

Wichtige Informationen aus der Anleitung

Das GoTaq® Probe 1-Step RT-qPCR System ist für quantitative PCR-Assays im Hydrolyse-Sonden-Format optimiert. Es kombiniert GoScript™ Reverse Transkriptase und GoTaq® Probe qPCR Master Mix für eine effiziente Echtzeit-Amplifikation. Die Hot-Start-Chemie ermöglicht die Vorbereitung der Reaktion bei Raumtemperatur.

Übersicht des GoTaq® Probe 1-Step RT-qPCR Protokolls
Übersicht des GoTaq® Probe 1-Step RT-qPCR Protokolls

Lagerung und Handhabung

Alle Komponenten müssen bei -30°C bis -10°C gelagert und stets vor Licht geschützt werden. Für beste Ergebnisse sollte die aufgetaute Lösung vorsichtig gemischt werden, um Belüftung und Schaumbildung zu minimieren. Die Lagerung auf Eis während der Verwendung wird empfohlen.

Vorbereitung der Reaktionsmischung

Die Vorbereitung erfolgt durch Kombination von GoScript™ RT Mix, GoTaq® Probe qPCR Master Mix mit dUTP, Primern, Sonde und Nuclease-freiem Wasser. Die RNA-Vorlage wird im letzten Schritt hinzugefügt. Das Gesamtvolumen beträgt standardmäßig 20µl.

Thermocycler-Protokolle

Das System unterstützt sowohl Standard- als auch FAST-Cycling-Bedingungen. Die Standard-Bedingungen umfassen eine Reverse Transkription bei 45°C für 15 Minuten, gefolgt von einer Aktivierung bei 95°C für 2 Minuten und 40 Zyklen der Denaturierung (95°C, 15 Sek.) sowie Annealing/Extension (60°C, 1 Minute).

Kontaminationsvermeidung

  • Verwenden Sie dedizierte Arbeitsbereiche und Pipetten für Vor- und Nach-Amplifikationsschritte.
  • Tragen Sie Handschuhe und wechseln Sie diese häufig.
  • Verwenden Sie aerosolresistente Pipettenspitzen.
  • Öffnen Sie die Reaktionsplatte oder Streifen-Wells nicht nach Abschluss der Amplifikation.

Praktische Hilfe

Typische Probleme

Kontaminationsrisiko

Verwenden Sie dedizierte Arbeitsbereiche, aerosolresistente Pipettenspitzen und öffnen Sie die Platten nicht nach der Amplifikation.

Instabile Reagenzien

Lagern Sie alle Komponenten bei -30°C bis -10°C und schützen Sie diese vor Licht. Vermeiden Sie mehr als 10 Gefrier-Auftau-Zyklen.

Vor der Verwendung

  • Reagenzien auftauen (nicht bei erhöhten Temperaturen).
  • Master Mix vor Gebrauch 3-5 Sekunden vortexen.
  • CXR Reference Dye bei Bedarf hinzufügen (je nach Instrument).
  • Reaktionsmischung ohne RNA-Vorlage vorbereiten.
  • RNA-Vorlage erst im letzten Schritt hinzufügen.
  • Platten kurz zentrifugieren, um den Inhalt am Boden zu sammeln.

Technische Daten in der Praxis

CXR Reference Dye
Dient zur Normalisierung bei Echtzeit-PCR-Instrumenten. Konzentration muss je nach Gerät (Low-Dye oder High-Dye) angepasst werden.
Hot-Start-Chemie
Ermöglicht die Vorbereitung der Reaktion bei Raumtemperatur, ohne vorzeitige Amplifikation.

Abbildungen und Diagramme

  • Abbildung 1 zeigt den Arbeitsablauf: Vorbereitung der Reaktionsmischung, Durchführung der RT-qPCR auf dem Instrument und anschließende Datenanalyse.

Modellkompatibilität

  • Kompatibel mit Standard- und FAST-Cycling-Programmen.
  • CXR-Farbstoffkonzentration muss basierend auf dem verwendeten Real-Time-PCR-Instrument gewählt werden (30nM für Low-Dye, 500nM für High-Dye).

Autor der Aufbereitung

Laura Fischer

Fachredakteurin für Gebrauchsanleitungen

Beschreibt zentrale Funktionen, Einsatzbereiche und Hinweise aus Handbüchern in einer kompakten und nutzerfreundlichen Form.